让人少吃达到减肥的妙药-利拉鲁肽如何绕过血脑屏障发挥作用?

2022年06月28日18:39:21 健康 1325

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撰文 | Qi


胰高血糖素样肽1GLP1是一种肠促胰岛素激素,通过其受体GLP1R来诱导胰岛素分泌,但体内DPP-4对GLP1的迅速降解限制了其在肥胖症和2型糖尿病(T2D)的治疗潜力。GLP1R激动剂——利拉鲁肽(liraglutide)的氨基酸序列与GLP1有97%的相似性,所携带的额外的白蛋白结合脂肪酸侧链可减少DPP-4对其的切割并延长其半衰期【1, 2】。利拉鲁肽可减少食物摄入、增加脂肪酸氧化,并诱导体重减轻,已被批准作为患或未患T2D个体的抗肥胖治疗【3】。大量研究表明利拉鲁肽可以在微血管水平,或在脑室周围器官(CVOs)如正中隆起(ME)或后极区(AP)穿过血脑屏障(BBB)抵达下丘脑内侧基底部的靶细胞来调节能量代谢,但确切的运输路线仍然未知【4, 5】


然而,手术切除AP并不能影响利拉鲁肽的药效。研究人员发现在ME中,一种成为“tanycytes”的高度特化的室管膜胶质细胞能够充当“守门人”,将瘦素和生长素释放肽等代谢信号转运到脑脊液【4, 6】,考虑到这群细胞可以通过ME毛细血管的有孔内皮壁与血源性营养物质和激素直接接触【7】,那么是否也可以介导利拉鲁肽进入下丘脑内侧基底部,从而使其能够调节能量稳态呢?


近日,来自法国EGID的Vincent Prevot团队和Caroline Bonner团队在Cell Metabolism杂志上合作发表了一篇题为Tanycytes control hypothalamic liraglutide uptake and its anti-obesity actions 的文章,他们证明利拉鲁肽能够绕过血脑屏障,通过tanycytes穿梭到下丘脑中的靶细胞如果选择性沉默tanycytes中的GLP1R或通过肉毒杆菌神经毒素表达抑制tanycytic转胞吞作用,会阻碍利拉鲁肽的转运并阻断其对食物摄入、体重减轻和脂肪酸氧化等抗肥胖作用。总之,描绘了利拉鲁肽的运输路线,强调了tanycytes作为代谢稳态关键“守门人”的地位。


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为了在进入大脑的过程中“捕获”利拉鲁肽以确定其运输路线,研究人员通过颈静脉内给药并对它进行了荧光标记。有趣的是,在注射后60 s,利拉鲁肽没有穿过BBB的微血管内皮细胞,而是通过ME的有孔血管外渗,短暂的出现在下丘脑弓状核腹正中(vmARH)的tanycytes和神经元胞体中。随后,他们利用transwell系统中的原代培养物研究了tanycytes在利拉鲁肽转运中的作用,体外脉冲追踪实验显示125I-利拉鲁肽被tanycytes快速吸收,若去除放射性标记底物,其胞内浓度立即下降。


为了确定tanycytes的转胞吞作用是否介导利拉鲁肽诱导的下丘脑神经元激活,研究人员利用了能特异性抑制SNARE介导的胞吐作用的、表达肉毒杆菌毒素血清型B轻链(BoNT/B)的小鼠模型,将重组蛋白TAT-Cre注射到BoNTB-EGFPloxP-STOP-loxP小鼠的第三脑室来实现tanycytes中的BoNT/B表达【8】,简称为“iBot”小鼠。值得注意的是,与对照组相比,在静脉注射利拉鲁肽之后,并未能显着诱导iBot小鼠下丘脑神经元中的cFos(神经元激活标志物)表达,说明阻断tanycytes中的囊泡运输会减弱下丘脑中利拉鲁肽介导的神经元激活,并证实利拉鲁肽是通过tanycytes的转胞吞作用进入下丘脑。


接下来,研究人员进一步探索利拉鲁肽在iBot小鼠中的抗肥胖作用。利拉鲁肽能显著降低对照组小鼠的食物摄入、促进与脂肪酸氧化增加相关的体重减轻和脂肪量减少,相反,在iBot小鼠中这些效应均被消除。为了确定tanycytes中的GLP1R表达是否在这一过程中发挥作用,研究人员利用shRNA沉默Glp1r表达,与iBot小鼠一样,Glp1rTanycyteKD小鼠对利拉鲁肽对食物摄入、体重减轻和脂肪酸氧化的影响具有抗性。


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迄今为止的研究虽然证明利拉鲁肽对减肥的影响,但并未指明其进入大脑的确切途径。这项工作表明,血源性利拉鲁肽并非由不表达GLP1R的内皮细胞介导穿过BBB,而是通过tanycytes的转胞吞作用直接作用于下丘脑中的靶神经元以调节能量稳态,强调了这群细胞的关键“桥梁”作用。


原文链接:

https://doi.org/10.1016/j.cmet.2022.06.002


制版人:十一



参考文献


1. Garber, A.J. (2011). Long-acting glucagon-like peptide 1 receptor agonists. Diabetes Care 34, S279–S284.

2. Kim, W., and Egan, J.M. (2008). The role of incretins in glucose homeostasis and diabetes treatment. Pharmacol. Rev. 60, 470–512.

3. Drucker, D.J., Habener, J.F., and Holst, J.J. (2017). Discovery, characterization, and clinical development of the glucagon-like peptides. J. Clin. Investig. 127, 4217–4227.

4. Prevot, V., Dehouck, B., Sharif, A., Ciofi, P., Giacobini, P., and Clasadonte, J. (2018). The versatile tanycyte: a hypothalamic integrator of reproduction and energy metabolism. Endocr. Rev. 39, 333–368.

5. Fortin, S.M., Lipsky, R.K., Lhamo, R., Chen, J., Kim, E., Borner, T., Schmidt, H.D., and Hayes, M.R. (2020). GABA neurons in the nucleus tractus solitarius express GLP-1 receptors and mediate anorectic effects of liraglutide in rats. Sci. Transl. Med. 12, eaay8071.

6. Garcia-Caceres, C., Balland, E., Prevot, V., Luquet, S., Woods, S.C., Koch, M., Horvath, T.L., Yi, C.X., Chowen, J.A., Verkhratsky, A., et al. (2019). Role of astrocytes, microglia, and tanycytes in brain control of systemic metabolism. Nat. Neurosci. 22, 7–14.

7. Langlet, F., Mullier, A., Bouret, S.G., Prevot, V., and Dehouck, B. (2013b). Tanycyte-like cells form a blood–cerebrospinal fluid barrier in the circumventricular organs of the mouse brain. J. Comp. Neurol. 521, 3389–3405.

8. Slezak, M., Grosche, A., Niemiec, A., Tanimoto, N., Pannicke, T., Munch, T.A., Crocker, B., Isope, P., Hartig, W., Beck, S.C., et al. (2012). Relevance of exocytotic glutamate release from retinal glia. Neuron 74, 504–516.

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